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Comment calculer la quantité d’insert pour une ligation

Pourquoi un rapport molaire

La ligation dépend du nombre d’extrémités d’ADN, pas de leur masse. Un petit insert contient beaucoup plus de molécules par ng qu’un grand vecteur : des masses égales donneraient donc des nombres de molécules très différents. C’est pourquoi les protocoles indiquent un rapport molaire entre insert et vecteur, le plus souvent 3:1.

La formule

insert (ng) = vecteur (ng) × taille de l’insert ÷ taille du vecteur × rapport

Avec 50 ng d’un vecteur de 3 000 pb et un insert de 1 000 pb à 3:1 : 50 × 1 000 ÷ 3 000 × 3 = 50 ng d’insert.

Conseils

  • Essayez 1:1, 3:1 et 5:1 si le premier essai donne peu de colonies.
  • Les inserts très courts, comme des oligos hybridés, demandent souvent des rapports plus élevés.
  • Prévoyez une ligation avec le vecteur seul, comme témoin du bruit de fond dû au vecteur non coupé ou refermé sur lui-même.
  • Mesurez les concentrations après la purification, pas avant.

L’outil

Le Calcul de ligation donne les ng d’insert pour n’importe quel rapport et, avec la concentration de l’insert, le volume à pipeter. Mesurez cette concentration avec le Calcul de concentration d’ADN.

Un exemple avec les volumes

D’après l’exemple ci-dessus, il faut 50 ng de vecteur et 50 ng d’insert. Si le vecteur est à 50 ng/µL et l’insert à 25 ng/µL :

  • Vecteur : 50 ÷ 50 = 1 µL.
  • Insert : 50 ÷ 25 = 2 µL.
  • Tampon de ligase 10× : 2 µL. ADN ligase T4 : 1 µL.
  • Eau jusqu’à 20 µL : 14 µL.

Le vérifier en moles

Une paire de bases d’ADN double brin pèse environ 650 g/mol, donc pmol = ng × 1 000 ÷ (pb × 650). Le vecteur fait 50 000 ÷ (3 000 × 650) ≈ 0,026 pmol et l’insert 50 000 ÷ (1 000 × 650) ≈ 0,077 pmol, trois fois plus.

Peu ou pas de colonies

  • L’ATP du tampon de ligase se dégrade à chaque congélation et décongélation. Conservez le tampon en petites aliquotes.
  • Les extrémités franches se lient bien moins facilement que les extrémités cohésives ; utilisez plus de ligase et une incubation plus longue.
  • Un vecteur déphosphorylé exige un insert qui a encore ses phosphates en 5′ ; les produits de PCR faits avec des amorces ordinaires n’en ont pas.

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